Nuove strategie di degradazione proteica per colpire complessi proteici
Le cellule non sono semplicemente contenitori di molecole, ma sistemi altamente organizzati in cui le proteine si assemblano dinamicamente per svolgere funzioni specifiche. Comprendere come questi assemblaggi si formano, si regolano e si disgregano rappresenta una delle sfide centrali della biologia moderna e una nuova frontiera per lo sviluppo di terapie innovative.
Il laboratorio di Targeted Protein Degradation (“TPD Lab” per gli amici) studia i principi fondamentali che regolano l’organizzazione dello spazio intracellulare e il controllo della funzione proteica, con un focus particolare sui condensati biomolecolari e sulle tecnologie di degradazione che possano modulare queste strutture. L’obiettivo è comprendere come questi processi contribuiscano alla fisiologia cellulare e come la loro alterazione sia alla base di numerose patologie.
I condensati biomolecolari sono compartimenti cellulari dinamici, privi di membrana, che si formano attraverso interazioni tra proteine e acidi nucleici, dando origine a microambienti specializzati con proprietà fisiche distinte dal resto del citoplasma o del nucleo. Queste strutture permettono di concentrare, organizzare e regolare reazioni biochimiche in modo rapido e reversibile, coordinando processi essenziali come l’espressione genica, la risposta allo stress e la replicazione. Alterazioni nella loro formazione, composizione o dinamica sono sempre più riconosciute come fattori chiave nello sviluppo di diverse malattie, tra cui infezioni virali, tumori, disordini neurodegenerativi e malattie genetiche.
In parallelo, la targeted protein degradation (TPD) sta ridefinendo il modo in cui è possibile intervenire sulla funzione proteica. Queste tecnologie permettono di eliminare selettivamente proteine specifiche, incluse quelle tradizionalmente considerate “undruggable”, offrendo nuove opportunità rispetto agli approcci basati sull’inibizione.
Utilizziamo i virus come modelli sperimentali per studiare la formazione e la funzione di questi assemblaggi e per sviluppare strategie di degradazione proteica in grado di colpirli selettivamente. Rimodellando profondamente l’ambiente cellulare, i virus generano strutture altamente organizzate che rappresentano sistemi ideali per analizzare questi processi a livello biochimico, cellulare e molecolare. Questo approccio ci permette di definire principi generali che governano l’assemblaggio e la regolazione delle strutture proteiche, trasferibili a numerose patologie caratterizzate da assemblaggi proteici disfunzionali.
Combinando biologia cellulare, biochimica e drug discovery, puntiamo a definire i meccanismi che governano l’assemblaggio e la regolazione dei condensati e a sviluppare strategie per disassemblarli o rimodellarli attraverso la degradazione proteica.
L’obiettivo finale è tradurre questi principi in nuove strategie terapeutiche, capaci di intervenire sull’organizzazione molecolare della cellula e di avere un impatto trasversale su molteplici malattie umane.
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Progetti
- VIRTAG – Targeted Degradation of viral replication factories as a novel platform for antiviral therapy (funded by MUR – Fondo Italiano per la Scienza 2 – Starting Grant)
- Novel protein degradation technologies to target intracellular proteins (funded by Linea 8 – Università di Milano)
Parole chiave:
condensati biomolecolari, degradazione di proteine, PROTACs, virus, aggregati proteici, organizzazione intracellulare, strategie terapeutiche innovative
Team
| Nome / Name | Ruolo / Role | |
|---|---|---|
| Chiara Aloise | Postdoctoral Scientist | aloise@ingm.org |
| Lorenzo Grasso | PhD Student | grasso@ingm.org |
| Alessio Puntin | Research Fellow | puntin@ingm.org |
| Maira Russo | Research Fellow | russo@ingm.org |
Pubblicazioni
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- Vetter J., Papa G., Tobler K., Rodriguez J. M., Kley M., Myers M., Wiesendanger M., Schraner E. M., Luque D., Burrone O. R., Fraefel C., & Eichwald C. (2024). “The recruitment of TRiC chaperonin in rotavirus viroplasms correlates with virus replication”. mBio, 15(4), e0049924.
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- Gaynor K. U., Vaysburd M., Harman M.A.J., Albecka A., Jeffrey P., Beswick P., Papa G., et al. (2023). “Multivalent bicyclic peptides are an effective antiviral modality that can potently inhibit SARS-CoV-2”. Nature Communications, 14(1), 3583.
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- Papa G.*, Venditti L., Braga L., Giacca M., Petris G.*, Burrone O.R.* (2020) “CRISPR Csy4-mediated editing of Rotavirus double-stranded RNA genome” Cell Reports,32(13):108205. *corresponding author
- Papa G.*, Venditti L., Arnoldi F., Schraner E.M., Potgieter C., Borodavka A., Eichwald C., Burrone O.R.*(2019) “Recombinant rotaviruses rescued by reverse genetics reveal the role of NSP5 hyperphosphorylation in the assembly of viral factories” Journal of Virology. 94, e01110-19. *corresponding author
- Van Dycke J., Arnoldi F.#, Papa G.#, et al. (2018) ”A Single Nucleoside Viral Polymerase Inhibitor against Norovirus, Rotavirus, and Sapovirus-Induced Diarrhea”. The Journal of Infectious Diseases 218(11):1753- 1758 #contributed equally
- Eichwald C., De Lorenzo G., Schraner E.M., Papa G., et al. (2018) “Identification of a small molecule that compromises the structural integrity of viroplasms and rotavirus double-layered particles” Journal of Virology; 92(3):e01943-17.
- Wiegand M.A., Gori-Savellini G., Gandolfo C., Papa G., Kaufmann C., Felder E., Ginori A., Disanto M.G., Spina D., Cusi M.G. (2017) “A Respiratory Syncytial Virus Vaccine Vectored by a Stable Chimeric and Replication-Deficient Sendai Virus Protects Mice without Inducing Enhanced Disease” Journal of Virology;91(10):e02298-16.
- De Lorenzo G., Drikic M., Papa G., Eichwald C., Burrone OR, Arnoldi F. (2016) “An Inhibitory Motif on the 5’UTR of Several Rotavirus Genome Segments Affects Protein Expression and Reverse Genetics Strategies” PLoS One 11(11):e0166719







